一、 实验原理
大肠杆菌是革兰氏阴性、兼性厌氧的肠道杆菌。微生物接种的方法有很多，常用的是平板划线法和稀释涂布平板法。
平板划线法是通过接种环在琼脂固体培养基表面连续划线的操作，将聚集的菌种逐步稀释分散到培养基的表面。在数次划线后培养，可以分离到由一个细胞繁殖而来的肉眼可见的子细胞群体，这就是菌落。
稀释涂布平板法则是将菌液进行一系列的梯度稀释，然后将不同稀释度的菌液分别涂布到琼脂固体培养基的表面，进行培养。在稀释度足够高的菌液里，聚集在一起的微生物将被分散成单个细胞，从而能在培养基表面形成单个菌落。
二、实验目的
1、掌握用平板划线法分离纯化大肠杆菌的方法；
2、掌握用稀释涂布平板法分离纯化大肠杆菌的方法。
三、仪器与用具
高压灭菌锅，超净工作台，接种环，培养皿，酒精灯，试管，玻璃涂布器，ph试纸，微量可调移液器，恒温培养箱，大肠杆菌，微生物的实验室培养试剂盒
四、实验准备
称取微生物培养试剂盒中的固体培养基6.4g加入200ml水中，加热充分溶解(可按培养的微生物适合生长条件需要调节ph)，121℃高压灭菌20min待用，可倒平板10个。
称取2g液体培养基加100ml蒸馏水溶解，调节ph至7.0，121℃高压灭菌20min，冷却后在超净台接入100μl大肠杆菌菌种，恒温振荡器37℃震荡培养12小时，用灭菌离心管每组分装1ml实验备用
五、实验步骤
1、倒平板操作：
⑴将灭过菌的培养皿放在火焰旁的桌面上，右手拿装有培养基的锥形瓶，左手打开封口膜。
⑵右手拿锥形瓶，使瓶口迅速通过火焰。
⑶用左手的拇指和食指将培养皿打开一条稍大于瓶口的缝隙，右手将锥形瓶中的培养基(约20ml)倒入培养皿，左手立即盖上培养皿的皿盖。
⑷等待平板冷却凝固，大约需要5～10min。然后，将平板倒过来放置，使皿盖在下，皿底在上。
2、平板划线操作：
⑴将接种环放在火焰上灼烧，直到接种环烧红；
⑵在火焰旁冷却接种环，并打开试管帽；
⑶将试管口通过火焰；
⑷将已冷却的接种环深入菌液中，沾取大肠杆菌液。
⑸将试管口通过火焰，并盖上试管冒。
⑹左手将皿盖打开一条缝隙，右手将沾有菌种的接种环迅速深入平板内，划三到五条平行线，盖上皿盖。注意不要划破培养基。
⑺灼烧接种环，待其冷却后，从一区域划线的末端开始往第二区域内划线。重复以上操作，在三、四、五区域内划线。注意不要将后一区的划线与一区相连。
3、系列稀释操作：
⑴将分别盛有9ml水的5支试管灭菌，并按101～105的顺序编号。
⑵用移液管吸取1ml培养的菌液，注入第二支试管中。吹吸三次或震荡，使菌液与水充分混匀。
⑶从101倍稀释的试管中吸取1ml稀释液，注入102倍稀释的试管中，重复第2步的操作。依次类推，直到完成后一只试管的稀释。
4、涂布平板操作：
⑴用火焰灼烧涂布器灭菌，然后冷却8～10s。
⑵取少量菌液(100μl)，滴加到培养基表面。
⑶用涂布器将菌液均匀地涂布在培养基表面。
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